ПРИМЕНЕНИЕ СИСТЕМЫ VIVOSTAT® КАК МЕТОДА ПРОФИЛАКТИКИ НЕСОСТОЯТЕЛЬНОСТИ АНАСТОМОЗА ПОСЛЕ НИЗКОЙ ПЕРЕДНЕЙ РЕЗЕКЦИИ ПРЯМОЙ КИШКИ. КЛИНИЧЕСКИЙ СЛУЧАЙ

Введение: По данным современной литературы несостоятельность анастомоза занимает лидирующие позиции среди всех осложнений колоректальной хирургии. Отдельным направлением профилактики данного осложнения в колоректальной онкологии является изучение возможностей применения биологических клеевых смесей в качестве универсального биологического и механического барьера на пути распространения внутрипросветной микрофлоры и опухолевых клеток.

Клинический случай: Пациентка 65 лет госпитализирована с диагнозом рак среднеампулярного отдела прямой кишки сT3сN1сM0 III стадии после проведения неоадъвантного химиолучевого лечения. Проведено хирургическое лечение в объеме лапароскопической низкой передней резекции прямой кишки с расширенной лимфодиссекцией, выведением протективной илеостомы. Анастомоз был сформирован на высоте 4 см от ануса. Интраоперационно выполнено укрепление линии анастомоза с помощью продукта системы VivostatR. Технология изготовления и применения смеси описана в работе. Послеоперационный период протекал без осложнений.

Выводы: Вследствие возможных экономических, онкологических и послеоперационных преимуществ применение современных фибриновых клеевых композиций является достаточно перспективным для внедрения в хирургическую практику. Требуется проведение исследований, направленных на изучение эффективности данного способа профилактики несостоятельности колоректальных анастомозов.

1. Федеральная служба государственной статистики (Росстат). Здравоохранение в России 2021г. Статистический сборник, 173 с., 2021, Online. Available: https://rosstat.gov.ru/storage/mediabank/Zdravoohran-2021.pdf.

2. P. Fransvea, G. Costa, L. D’Agostino, G. Sganga, and A. Serao, Redo-laparoscopy in the management of complications after laparoscopic colorectal surgery: a systematic review and meta-analysis of surgical outcomes, Techniques in Coloproctology, vol. 25, no. 4. 2021, https://doi.org/10.1007/s10151-020-02374-8

3. C. Foppa, S. C. Ng, M. Montorsi, and A. Spinelli. Anastomotic leak in colorectal cancer patients: New insights and perspectives. European Journal of Surgical Oncology, vol. 46, no. 6. 2020, https://doi.org/10.1016/j.ejso.2020.02.027

4. R. E. Clifford, H. Fowler, N. Govindarajah, D. Vimalachandran, P.A. Sutton. Early anastomotic complications in colorectal surgery: a systematic review of techniques for endoscopic salvage. Surgical Endoscopy, vol. 33, no. 4. 2019, https://doi.org/10.1007/s00464-019-06670-9

5. Sciuto A, Merola G, De Palma GD, Sodo M, Pirozzi F, Bracale UM, Bracale U. Predictive factors for anastomotic leakage after laparoscopic colorectal surgery. World J Gastroenterol. 2018 Jun 7;24(21):2247-2260. doi:10.3748/wjg.v24.i21.2247

6. Vasiliu EC, Zarnescu NO, Costea R, Neagu S. Review of Risk Factors for Anastomotic Leakage in Colorectal Surgery. Chirurgia (Bucur). 2015 Jul-Aug;110(4):319-26.

7. Meyer J, Naiken S, Christou N, Liot E, Toso C, Buchs NC, Ris F. Reducing anastomotic leak in colorectal surgery: The old dogmas and the new challenges. World J Gastroenterol. 2019 Sep 14;25(34):5017-5025. doi:10.3748/wjg.v25.i34.5017

8. Галлямов Э.А., Агапов М.А., Луцевич О.Э., Кубышкин В.А., Какоткин В.В. Попытка оптимизации сроков реконструкции гастроинтестинального тракта на примере раннего закрытия илеостом у больных раком прямой кишки. рандомизированное мультицентровое исследование. Хирургическая практика. 2019;(3):24-31. https://doi.org/10.38181/issn2223-2427.2019.3.24-31

9. Allaix ME, Lena A, Degiuli M, Arezzo A, Passera R, Mistrangelo M, Morino M. Intraoperative air leak test reduces the rate of postoperative anastomotic leak: analysis of 777 laparoscopic left-sided colon resections. Surg Endosc. 2019 May;33(5):1592-1599. https://doi.org/10.1007/s00464018-6421-8

10. Wu Z, van de Haar RC, Sparreboom CL, Boersema GS, Li Z, Ji J, Jeekel J, Lange JF. Is the intraoperative air leak test effective in the prevention of colorectal anastomotic leakage? A systematic review and meta-analysis. Int J Colorectal Dis. 2016 Aug;31(8):1409-17. https://doi.org/10.1007/s00384-0162616-4

11. Y. Yang, Y. Shu, F. Su, L. Xia, B. Duan, and X. Wu. Prophylactic transanal decompression tube versus non-prophylactic transanal decompression tube for anastomotic leakage prevention in low anterior resection for rectal cancer: a metaanalysis. Surg. Endosc., vol. 31, no. 4, 2017, https://doi.org/10.1007/s00464-016-5193-2

12. H. J. Kim, J. W. Huh, H. R. Kim, and Y. J. Kim. Oncologic impact of anastomotic leakage in rectal cancer surgery according to the use of fibrin glue: Case-control study using propensity score matching method. Am. J. Surg., vol. 207, no. 6, 2014, https://doi.org/10.1016/j.amjsurg.2013.07.047

13. J. Lago Oliver. The systematic use of fibrin-based biological adhesive to prevent leakage due to healing defects in rectal anastomosis significantly reduces сosts. J. Surg., vol. 3, no. 2, 2015, https://doi.org/10.11648/j.js.20150302.12

14. S. Panda, M. P. Connolly, M. G. Ramirez, and J. B. de Heredia. Costs analysis of fibrin sealant for prevention of anastomotic leakage in lower colorectal surgery. Risk Manag. Healthc. Policy, vol. 13, 2020. doi:10.2147/RMHP.S221008

15. Vakalopoulos KA, Daams F, Wu Z, Timmermans L, Jeekel JJ, Kleinrensink GJ, van der Ham A, Lange JF. Tissue adhesives in gastrointestinal anastomosis: a systematic review. J Surg Res. 2013 Apr;180(2):290-300. https://doi.org/10.1016/j.jss.2012.12.043

16. Plat VD, Bootsma BT, van der Wielen N, Straatman J, Schoonmade LJ, van der Peet DL, Daams F. The role of tissue adhesives in esophageal surgery, a systematic review of literature. Int J Surg. 2017 Apr;40:163-168. https://doi.org/10.1016/j.ijsu.2017.02.093

17. J. R. McGregor, D. H. Reinbach, S. W. Dahill, and P. J. O’Dwyer. Effect of fibrin sealant on perianastomotic tumor growth in an experimental model of colorectal cancer surgery. Dis. Colon Rectum, vol. 36, no. 9, 1993, https://doi.org/10.1007/BF02047379

18. Schips L, Dalpiaz O, Cestari A, Lipsky K, Gidaro S, Zigeuner R, Petritsch P. Autologous fibrin glue using the Vivostat system for hemostasis in laparoscopic partial nephrectomy. Eur Urol. 2006 Oct;50(4):801-5. https://doi.org/10.1016/j.eururo.2006.03.010

19. A. Garayev, Ö. Aytaç, and F. Atuğ. Effect of autologous fibrin glue (VivostatTM) on lymphatic drainage and lymphocele formation in extended pelvic lymph node dissection in robot assisted radical prostatectomy, Eur. Urol. Suppl., vol. 18, no. 1, 2019, https://doi.org/10.1016/s1569-9056(19)31318-1

20. Graziano F, Certo F, Basile L, Maugeri R, Grasso G, Meccio F, Ganau M, Iacopino DG. Autologous fibrin sealant (Vivostat(®)) in the neurosurgical practice: Part I: Intracranial surgical procedure. Surg Neurol Int. 2015 May 12;6:77. https://doi.org/10.4103/2152-7806.156871

21. F. Graziano, R. Maugeri, L. Basile, F. Meccio, and D. G. Iacopino, Aulogous fibrin sealant (Vivostat®) in the neurosurgical practice: Part II: Vertebro-spinal procedures, Surg. Neurol. Int., vol. 7, 2016, https://doi.org/10.4103/21527806.174894

22. Bayer A, Höntsch G, Kaschwich M, Dell A, Siggelkow M, Berndt R, Rusch R, Harder J, Gläser R, Cremer J. Vivostat Platelet-Rich Fibrin® for Complicated or Chronic Wounds-A Pilot Study. Biomedicines. 2020 Aug 6;8(8):276. https://doi.org/10.3390/biomedicines8080276

23. Bayer A, Tohidnezhad M, Lammel J, Lippross S, Behrendt P, Klüter T, Pufe T, Jahr H, Cremer J, Rademacher F, Gläser R, Harder J. Platelet-Released Growth Factors Induce Differentiation of Primary Keratinocytes. Mediators Inflamm. 2017;2017:5671615. https://doi.org/10.1155/2017/5671615

24. C. Cipriani. Levels and kinetic of the growth factor release and antibacterial activity in allogenic platelet gel for treatment of GVHD ulcers: A study from the Rome transplant network. Bone Marrow Transplant., vol. 50, no. SUPPL. 1, 2015.

25. Bayer A, Wijaya B, Möbus L, Rademacher F, Rodewald M, Tohidnezhad M, Pufe T, Drücke D, Gläser R, Harder J. Platelet-Released Growth Factors and Platelet-Rich Fibrin Induce Expression of Factors Involved in Extracellular Matrix Organization in Human Keratinocytes. Int J Mol Sci. 2020 Jun 20;21(12):4404. https://doi.org/10.3390/ijms21124404

26. C. Cipriani, Vivostat® System: clinical efficacy and antimicrobial activity, Transfus. Apher. Sci., vol. 50, 2014, https://doi.org/10.1016/s1473-0502(14)50044-4

27. R. Lundquist, M. H. Dziegiel, and M. S. Ågren, Bioactivity and stability of endogenous fibrogenic factors in platelet-rich fibrin. Wound Repair Regen., vol. 16, no. 3, 2008, doi:10.1111/j.1524-475X.2007.00344.x

28. J. L. Velada and D. A. Hollingsbee. Physical Characteristics of Vivostat® Patient-Derived Sealant. Eur. Surg. Res., vol. 33, no. 5–6, 2001, https://doi.org/10.1159/000049737

29. M. Klein, “Postoperative non-steroidal anti-inflammatory drugs and colorectal anastomotic leakage: NSAIDs and anastomotic leakage,” Dan. Med. J., vol. 59, no. 3, 2012.

30. V. D. Plat, B. T. Bootsma, N. van der Wielen, D. L. van der Peet, and F. Daams, “Autologous activated fibrin sealant for the esophageal anastomosis: a feasibility study,” J. Surg. Res., vol. 234, 2019, https://doi.org/10.1016/j.jss.2018.08.049

31. L. G.C. and H. I., “Ducest-therapy, an innovative treatment for therapy of refractory chronic lower leg ulcers,” Transfusion Medicine and Hemotherapy, vol. 42. 2015.

32. K. Udo, W. Claudio, Q. Rodrigo, L. Francisco, J. Claudio, and Z. Alejandro, “P-115 Local Experience for Treatment of IBD-Related Recurrent Anal Fistulae Based on Autologous Stem-Cells and Platelet Rich Plasma,” Inflamm. Bowel Dis., vol. 20, 2014, https://doi.org/10.1097/01.mib.0000456844.47907.0a

33. R. Tutino, Autologous adipose-derived stem cells and platelets concentrates for the treatment of complex perianal fistulas, Tech. Coloproctol., vol. 24, 2020.

34. A. Moreno-Serrano, J. J. García-Díaz, M. Ferrer-Márquez, R. Alarcón-Rodríguez, A. Álvarez-García, and Á. Reina-Duarte, Using autologous platelet-rich plasma for the treatment of complex fistulas, Rev. Esp. Enferm. Dig., vol. 108, no. 3, 2016, https://doi.org/10.17235/reed.2016.3946/2015